In den letzten Jahren hat sich die durch den Pilz Colletotrichum coccodes verursachte Anthracnose-Krankheit (schwarzer Fleck, schwarzer Punkt, schwarzer Punkt) in den Hauptgebieten des Kartoffelanbaus ausgebreitet. Hersteller und Forscher hielten es lange Zeit für eine unbedeutende Krankheit ohne nennenswerte Bedeutung. Doch die zunehmende Schädlichkeit vor dem Hintergrund gestiegener Anforderungen an die Qualität von Knollen sowohl in frischer Form als auch in der verarbeitenden Industrie hat Anthracnose in die Kategorie einer wirtschaftlich bedeutsamen Krankheit überführt, die erhebliche wirtschaftliche Verluste verursacht. Wissenschaftlichen Veröffentlichungen zufolge (Kuznetsova M.A. et al., 2020) war Anthracnose auf Kartoffeln in Russland erst etwa Mitte der 1950er Jahre weit verbreitet. Dann kam es zu einem allmählichen Anstieg der Krankheit. In den Jahren 1980-1985 betrug der Befall von Kartoffelpflanzen durch Anthracnose 5 bis 25 %, in den Jahren 1986-1987 10 bis 35 %, im heißen und trockenen Sommer 1988 betrug der Befall von Spitzen 10 bis 70 % 1989 - von 5 auf 40 %, 1990-2000 - von 3 auf 35 %, 2001-2009 - von 2 auf 55 %, im heißen und trockenen Sommer 2010 von 5 auf 100 %, 2011-2019 - von 3 bis 65 %. Die Forscher sind sich einig, dass die Hauptgründe für die Zunahme des Anthracnose-Schweregrades die Einfuhr von infiziertem Saatgut, die Ausbreitung mit Samen, die Schädigung der Knollen beim maschinellen Anbau und eine Abnahme der Pflanzenresistenz vor dem Hintergrund ungünstiger Wachstumsbedingungen sind. Anthracnose kann den Kartoffelertrag direkt um 12–30 % verringern, die Produktqualität aufgrund äußerer Flecken auf der Schale und Verfärbung des inneren Gewebes verschlechtern und zu einer Verschlechterung der Marktfähigkeit der Ernte während der Lagerung führen.


Anthracnose-Symptome. Der Pilz Colletotrichum coccodes kann auf Knollen, Ausläufern, Wurzeln, Stängeln und Blättern von Kartoffeln auftreten. An den oberirdischen Pflanzenteilen äußern sich die ersten Symptome von Anthracnose in einer Gelbfärbung und Austrocknung der Blätter. Gleichzeitig bleiben die Stängel lange grün (Foto 1). Nur durch die Gelbfärbung der Blätter lässt sich Anthracnose nicht feststellen. Das Austrocknen von Kartoffelblättern kann nicht nur durch Anthracnose, Sklerotinia, Pektobakterien, sondern auch durch Cercosporose, Alternariose und Verticillium (Welke) verursacht werden. Durch das gemeinsame Auftreten neuartiger Infektionen wird in der Produktion zunehmend ein atypisch frühes Austrocknen von Kartoffelpflanzen beobachtet.

In der zweiten Hälfte der Vegetationsperiode befällt die Krankheit die Stängel. Zunächst erscheinen kleine bronzene Flecken im Bereich der Anhaftung getrockneter Blätter (Foto 2). Dann dehnt sich der betroffene Bereich aus (Foto 3). In Zukunft nehmen die Flecken zu, auf ihnen erscheint eine weiße Myzelschicht. Das Gewebe des Stängels unter dem Myzel verfärbt sich von Bronze zu Schwarz (Foto 4,5). Weiße Plaque an den Stielen wird auch durch Rhizoktoniose, Sklerotinie und Graufäule verursacht.


Foto 2,3. Anthracnose-Entwicklung an Stängeln


Foto 4,5. Weiße Blüte des Anthracnose-Myzels an Stielen
Anthracnose-Flecken befallen auch die unterirdische Zone der Stängel. In der Farbe ähneln sie der Manifestation der Rhizoktoniose (Foto 6). Allerdings ist bei der Rhizoktoniose im Gegensatz zur Anthraknose die Grenze zwischen befallenem und gesundem Gewebe sehr klar.

Mit der weiteren Entwicklung von Anthracnose im unterirdischen Teil der Pflanze an der Stelle der Schädigung der Stängel, Stolonen und Wurzeln verrottet die Oberfläche, blättert ab und lässt sich leicht trennen (Foto 7). Bei hoher Luftfeuchtigkeit nimmt der Schaden einen hellvioletten Farbton an.

Beschädigte Stängel lassen sich leicht aus dem Boden ziehen. An der Infektionsstelle der Stängel bilden sich viele schwarze Mikrosklerotien (Foto 8). Daher der englische Name der Krankheit – schwarzer Punkt (schwarzer Punkt). Aber auch das ist kein Ausnahmesymptom, Sklerotien bilden auch Verticillium und Weißfäule.

Die Symptome von Anthracnose an Knollen sind sehr unterschiedlich. Zunächst handelt es sich um graue, ungeordnete Flecken auf der Schale. Während der Lagerung entsteht ein silberner Farbton (Foto 9). Im Gegensatz zum Silberschorf sind die Anthracnose-Flecken weniger scharf von der gesunden Schale getrennt und es sind Mikrosklerotien auf den Flecken sichtbar (Foto 10). Auf der Oberfläche der Knolle treten typische schwarze Flecken mit silberbraunen Flecken auf, wobei das gesamte erkrankte Gewebe mit kleinen schwarzen Mikrosklerotien gesättigt ist. Stark befallene Knollen schrumpfen, die Haut lässt sich leicht von der Oberfläche abziehen, wo sich auch kleine Sklerotien bilden. Die Oberfläche der Knollen ist uneben und holprig. Auf dem Schnitt der befallenen Knollen ist bis zu einer Tiefe von 0.5–0.8 cm ein braun gefärbtes Gewebe zu erkennen, mit der Zeit erscheinen harte, vertiefte Stellen. Bei längerer Inkubation unter Lagerbedingungen breiten sich die Krankheitssymptome in der gesamten Knolle aus, es kommt zu nässendem Gewebe, Schleim und der vollständigen Zerstörung dieser Knollen.




Foto 9. Symptome und Sklerotien von Anthracnose an Knollen

Bei starker Anthracnose-Entwicklung werden vertiefte Stellen, Schalenrisse, dunkle Schäden am Gefäßring und der Knollenpulpe festgestellt, die sich etwas von anderen Knollenerkrankungen (Phytophthora, Phomose, Fusarium, Ditylenchose) unterscheiden, jedoch nicht eindeutig. Visuelle Symptome reichen in diesem Stadium nicht aus, um den Erreger zu identifizieren (Foto 11).


Infektionsquellen und Faktoren bei der Entstehung von Anthracnose. Eine Infektion von Kartoffeln mit C. coccodes kann durch Boden-, Knollen- und Luft-Inokulum verursacht werden. Bodeninokulum ist im Vergleich zu Knollen in der Regel schädlicher. Im Boden kann der Pilz entweder als Sklerotien oder als Konidien in nicht nachweisbaren Mengen vorkommen. Früher ging man davon aus, dass Sklerotien länger als 4 Jahre im Boden überleben, derzeit gibt es Behauptungen, diesen Zeitraum auf 8-15 Jahre zu verlängern. Der Erreger überwintert in Form von Sklerotien auf der Oberfläche befallener Knollen, auf Pflanzenresten und im Boden. Im Frühjahr bilden sich Sporen auf Pflanzenresten und Knollen und breiten sich mit Feuchtigkeitstropfen im Boden und auf der Pflanze aus. Im Sommer keimen Sporen in tropfender Feuchtigkeit und können alle Pflanzenteile infizieren. Eine erneute Infektion von Pflanzen kommt mehrmals pro Saison vor, Sporen werden durch Wind, Insekten und Regentropfen verbreitet. C. coccodes infiziert häufig Kartoffelstängel und andere Gewebe zu Beginn der Vegetationsperiode, aber Symptome von Chlorose und Blattnekrose sowie Sklerotien-Anzeichen des Erregers treten oft erst relativ spät in der Vegetationsperiode auf.
Infizierte Samenknollen sind in der Regel die erste Quelle einer Bodeninfektion und eine wichtige Infektionsquelle für Wurzeln, Ausläufer und Tochterknollen. Jeder Teil der Oberfläche der Knolle kann mit C. coccodes infiziert sein, was zu einer Folgeinfektion des Stiels führen kann. Es ist nicht möglich, den gesamten Befall in einer Charge zu erkennen, da der Pilz möglicherweise einen kleinen Teil der Oberfläche einnimmt oder sich im Inneren der Knolle befindet. Samen ohne sichtbare Anzeichen von C. coccodes können infiziert sein. Der Pilz aus dem Samenmaterial besiedelt nach und nach den Boden und entfernt sich mit einer Geschwindigkeit von 1 mm pro Tag von der infizierten Knolle. Eine Infektion des Muttersamens hat eine dauerhafte Auswirkung auf die Infektion der Nachkommen, und diese Infektion durch den Muttersamen beginnt kurz nach dem Pflanzen. Samenknollen mit äußerer Infektion produzieren Nachkommenknollen mit der höchsten Infektionshäufigkeit und -schwere sowie einer Stamminfektion und der Anzahl der betroffenen Knollen am Ende des Ausläufers. Ähnliche Ausmaße der Krankheit entwickeln sich an Knollen und Stängeln von Pflanzen, die aus gesunden Knollen gewachsen sind, aber in der Nähe von Samenknollen mit innerer oder äußerer Infektion. Anthracnose-Myzel wandert im Boden von infizierten Samenknollen zu Tochterknollen benachbarter Pflanzen. Es besteht kein Zusammenhang zwischen einer Oberflächeninfektion der Knollen und einer inneren Infektion. Allerdings wiesen alle Knollen mit inneren Infektionen auch äußere Infektionen auf. Eine Gefäßinfektion von C. coccodes in Samenknollen ist besonders besorgniserregend, da es unwahrscheinlich ist, dass Gefäßinfektionen durch die Behandlung infizierter Knollen mit Fungiziden, die auf die Knollenoberfläche aufgetragen werden, bekämpft werden können.

Was ist die Ursache der Niederlage – infiziertes Saatgut, kontaminierter Boden, Übertragung über die Luft? Dies kann anhand einiger Merkmale der Läsion festgestellt werden. Die durch die Luft übertragene Läsion ähnelt im Aussehen der Alternariose, es bilden sich jedoch keine konzentrischen Ringe innerhalb der Läsion. In Regionen, die anfällig für Staubstürme sind, besteht auf diese Weise ein hohes Risiko eines Blattbefalls, da Sandwunden den Weg für das Eindringen des Pilzes darstellen. Die hohe Infektionshäufigkeit der Knollen am Ausläuferende weist darauf hin, dass die Primärinfektion der Tochterknollen durch das Eindringen des Erregers durch die Ausläufer, d. h. von der Mutterknolle. In einer Studie wurde ein Feld mit scheinbar sauberen Samen in neuen Boden gepflanzt, es wurde jedoch festgestellt, dass 15 bis 88 % der Tochterknollen befallen waren.
Wenn der Boden die Hauptquelle ist, erfolgt die Entwicklung von Mikrosklerotien an Knollen zufällig über die gesamte Oberfläche der Knollen. Die Symptome der Schwarzfleckigkeit treten im Wurzelgewebe zum Zeitpunkt der ersten Beurteilung 60 Wochen nach der Pflanzung häufig auf (90 bis 5 %), unabhängig von der Menge des Inokulums (niedrig oder hoch), aber an Stängeln, die sich unter der Erde befinden, tritt die Krankheit auf ist zu diesem Zeitpunkt kaum oder gar nicht sichtbar. Eine ähnliche Studie mit aus Knollen stammendem Inokulum zeigte, dass Symptome an Wurzeln und Stolonen etwa zum Zeitpunkt des Auflaufens festgestellt werden können, während Symptome an Stängeln etwa 7 bis 10 Wochen nach der Inokulation auftreten. Studien, die unter kommerziellen Wachstumsbedingungen im Bundesstaat Washington (USA) durchgeführt wurden, zeigten, dass C. coccodes bereits 15 Tage nach dem Auflaufen an oberirdischen Stängeln und später, 22 Tage nach dem Auflaufen an unterirdischen Stängeln, auftritt; Bei späteren Probenahmeterminen wurden jedoch in der Regel mehr Infektionen aus unterirdischen Stämmen isoliert.
Unter Feldtestbedingungen in Schottland war die Kolonisierung von Wurzelgewebe aus krankheitsfreien, mikrovermehrten Pflanzen mit C. coccodes bei der Beurteilung zu Beginn der Vegetationsperiode ähnlich wie bei Wurzeln, die sowohl aus optisch sauberen als auch aus defekten Samenknollen gewonnen wurden, war jedoch deutlich geringer zu späteren Probenahmeterminen. In den Versuchen in Idaho war die Besiedlung von Stammgewebe durch C. coccodes über und unter der Erde höher als die Häufigkeit der Besiedlung von Ausläufern und Wurzeln. Dieser Trend setzte sich fort, unabhängig davon, ob die Infektion auf eine Kontamination des Bodens, der Samenknollen oder einer Blattimpfung zurückzuführen war. Dies steht im Gegensatz zu früheren Studien, die gezeigt haben, dass Symptome der Schwarzpünktchenkrankheit im Vergleich zu anderen untersuchten Pflanzengeweben zuerst im Wurzelgewebe zu finden sind. Verschiedene Studien bewerteten unterschiedliche Indikatoren: die Schwere der Symptome oder die Besiedlung des Gewebes durch den Pilz, was der wahrscheinlichste Grund für die Diskrepanzen ist. Es ist allgemein anerkannt, dass Infektionen mit C. coccodes in Stämmen länger latent bleiben als in Wurzeln und Ausläufern.
Studien, die die Auswirkungen von Boden und Saatgut vergleichen, haben gezeigt, dass eine Bodeninfektion mehr schwarze Flecken verursacht als eine durch Samen übertragene Infektion. Im Feld in England führten unterschiedliche Mengen an Saatknollen-Inokulum zu einem Anstieg der Anthracnose-Infektion an Stammbasen und Wurzeln, jedoch nicht proportional zum Grad der Saatknollen-Infektion, während der Grad der Bodeninfektion funktionell den Grad der Anthracnose-Infektion bestimmt. Eine Erhöhung der Menge an Bodeninokulum erhöht die Schwere der Krankheit, einschließlich Blattnekrose und Chlorose sowie der Entwicklung von Sklerosen an Wurzeln und Stängeln.
Zu wissen, wie Felder mit Schwarzpunkt-Inokulum kontaminiert werden, hilft bei Entscheidungen über die Standortwahl, den Einsatz fungizider Bodenbearbeitung oder die Sorte, die auf einem bestimmten Feld angebaut werden soll. Für Anthracnose wurde eine genaue Testmethode auf der Grundlage einer DNA-PCR-Analyse entwickelt und der Zusammenhang zwischen der Inokulummenge im Boden und dem Risiko einer Kartoffelkrankheit festgestellt. Das Bodenprobenahmeverfahren für den Anthracnosetest ähnelt dem Nematodentest. Anthracnose-Ziel-DNA wird durch PCR quantifiziert und als pg DNA/g Boden ausgedrückt (pg ist ein Pikogramm oder Billionstel Gramm). Die Ergebnisse der Bodentests kategorisieren das Risiko als niedrig (0–100 pg DNA/g Boden), mittel (101–1000 pg DNA/g Boden) und hoch (>1000 pg DNA/g Boden), basierend auf den Auswirkungen der Bodenkontamination auf Kartoffeln. Wenn der Schwellenwert niedrig ist, besteht nur ein geringes Risiko für krankheitsverursachende Mengen an Anthracnose, die die Marktfähigkeit beeinträchtigen könnten. Wenn der Schwellenwert hoch ist, besteht ein hohes Risiko, dass die Marktfähigkeit eines erheblichen Teils der Knollen verringert wird, sofern keine Gegenmaßnahmen ergriffen werden (Abbildung 13). Allerdings erwiesen sich die Entwicklungsmuster von Anthracnose in vielen Studien als sehr widersprüchlich, und eine Infektion des Bodens oder des Saatguts führt nicht immer zu einer entsprechenden Verringerung des Ertrags und der Qualität der Knollen. Tatsache ist, dass die Folgen einer Infektion mit Anthracnose letztendlich immer von einer einzigartigen Kombination äußerer Bedingungen und agrotechnischer Merkmale der Produktionsbedingungen abhängen.

Die optimale Temperatur für das Wachstum von C. coccodes-Hyphen beträgt 24 °C оC. Die Bildung von Sklerotien und die anschließende Infektion von Pflanzengewebe erfolgt über einen weiten Temperaturbereich. Im Alter von 15 Jahren wurden an den Knollen keine Symptome beobachtet оC, aber bei dieser Temperatur wurde eine große Anzahl infizierter Stängel gefunden. Belüftung und Licht beeinflussen auch die Keimung von Sklerotien. Konidien werden in größerer Zahl auf oberirdischen Sklerotien gebildet.
Anthracnose wird am häufigsten mit leicht sandigen Böden, hohen Temperaturen und schlechter Wasserableitung in Verbindung gebracht. Die Vielfalt der Schäden an Pflanzen, die Stress ausgesetzt sind, macht es jedoch schwierig, Trends im Einfluss abiotischer und biotischer Faktoren auf die Krankheitsentwicklung zu erkennen. In den USA haben übermäßige Regenfälle, Bewässerung und niedrige Temperaturen zu Beginn der Saison, gefolgt von einer anhaltenden Dürre, zur Ausbreitung der Krankheit geführt. In England reduzierte die Bewässerung die Infektion von Stängeln, Wurzeln und Knollen bis zu 18 Wochen nach der Pflanzung, nahm jedoch in späteren Stadien zu. In Israel, wo alle Kulturpflanzen regelmäßig bewässert werden, wurden bei hohen Temperaturen und relativ trockenem Boden Krankheiten und Ernteverluste beobachtet.
Alle Kartoffelsorten sind anfällig für C. coccodes, allerdings in unterschiedlichem Ausmaß. Ausländische Studien haben gezeigt, dass dünnhäutige Sorten anfälliger für Anthracnose sind als dickhäutige Sorten. Es gibt erhebliche Unterschiede zwischen den Sorten in der Häufigkeit der Besiedlung der Stängel und der Schwere der Schäden an der Oberfläche der Knollen. Bei einigen Sorten wurden Unterschiede zwischen Stängel- und Knolleninfektionen beobachtet, zum Beispiel hat Desiree die geringste Stängelinfektion, aber eine der höchsten Knolleninfektionsraten. Die Schwere der Infektion ist bei frühen Sorten höher, da die Knollen über einen längeren Zeitraum mit dem Bodeninokulum in Kontakt stehen. Variationen treten sowohl bei frühen als auch bei späten Sorten auf, was auf einen genetischen Einfluss schließen lässt. In der Russischen Föderation wurden separate Studien zur Resistenz von Kartoffelsorten gegenüber Anthracnose durchgeführt. Beispielsweise zeigte die VIZR-Überwachung von Knollenmaterial der Elitekategorien in der Nordwestregion, dass die Sorten Gala, Lomonosovsky, Eurasia, Labadiya und Sudarynya am wenigsten von Anthracnose betroffen waren und dass Nevsky, Red Scarlett, Charodey und Aluet am anfälligsten waren .
Die Häufigkeit des Auftretens von Anthracnose an Knollen ist bei ein- bis dreijährigen Kartoffelfruchtfolgen höher. Die Anthracnose-Inzidenz nimmt mit zunehmender Anzahl der Jahre zwischen den Kartoffelernten deutlich ab. C. coccodes kommt 10 bis 15 Jahre lang auf Feldern ohne Kartoffeln vor, nach 6 oder mehr Jahren ohne Kartoffelproduktion sinken die Infektionsraten jedoch. Viele Arten von Kultur- und Unkrautpflanzen sind von Anthracnose befallen, sind Wirtspflanzen und tragen zur langfristigen Persistenz der Infektion im Boden bei. Ausländische Studien haben gezeigt, dass es ein breites Wirtsspektrum gibt, das mindestens 58 Arten und 17 Familien umfasst, hauptsächlich Gemüse aus der Familie der Nachtschattengewächse – Tomaten, Auberginen, rote Paprika, Tabak. Aber auch Karotten, Zwiebeln, Brokkoli, Salat, Tafel- und Zuckerrüben, Raps, Gelbsenf sind betroffen. Weizen, Mais, Sojabohnen, Sonnenblumen, Getreidegräser, Bohnen, Erbsen sind nicht anfällig für die Krankheit. Von einigen Pflanzenarten freigesetzte Zerfallsprodukte – Kreuzblütler, Steinklee, Lupine, Sorghum-Sudan-Hybride – reduzieren das Wachstum vieler Arten pathogener Pilze. Die Verwendung von Biofumigant-Pflanzen verringert den Schweregrad von Anthracnose.
Viele Unkräuter (Schwarzer Nachtschatten, Ackerwinde, Weiße Gaze, Hirtentäschelkraut, Brennnessel, Staudenknöterich, Heliotrop etc.) können zu einer Erhöhung der Inokulummenge führen oder als Primärinokulumquelle für Kartoffeln dienen. Das Inokulum von C. coccodes überlebt im Boden nicht nur auf anderen Wirtsarten, sondern auch auf Kartoffelknollen, die nach der Ernte auf dem Feld zurückgelassen werden. Sie keimen im nächsten Jahr und häufen viele Krankheiten an. Unkrautkartoffelknollen bleiben nach der ersten Ernte mehrere Jahre lang lebensfähig. Freiwilligenkontrolle, d.h. Freiwillige Kartoffel ist entscheidend, um die Menge des primären Anthracnose-Inokulums im Boden zu reduzieren.
Pflanzenstress, der durch Nährstoffmangel oder -ungleichgewichte verursacht wird, kann auch die Anthracnose-Besiedlung von Kartoffelwurzeln verstärken. In kontrollierten Experimenten wurde Stickstoff in Mengen von 5, 40, 160 und 640 ppm verabreicht, um Pflanzen durch Stickstoffmangel und -überschuss zu stressen. Bewurzelte Pflanzen wurden mit einer Suspension von C. coccodes-Sporen inokuliert. Die Kolonisierung des Wurzelsystems war beim niedrigsten Stickstoffgehalt (5 ppm) am größten. Die Wurzelbesiedlung nahm ab, als die Stickstoffkonzentration auf 160 ppm anstieg, was dem optimalen N-Gehalt entsprach, und nahm dann zu, als der Stickstoff auf 640 ppm anstieg. Beim Kaliumtest erfolgte die stärkste Wurzelbesiedlung bei der niedrigsten Kaliumkonzentration (0 mg K) und nahm ab, als die Kaliumkonzentration auf 80 mg (optimales K) anstieg, und nahm dann leicht zu, als die Kaliumkonzentration auf 160 mg anstieg K. Das gleiche Muster wurde beim Testen von Phosphor beobachtet. Die stärkste Wurzelbesiedlung erfolgte bei der niedrigsten Phosphorkonzentration (0,032 ml) und nahm dann ab, als die Phosphorkonzentration auf die optimale P-Konzentration (1,00 ml) anstieg. Daher werden Kartoffelwurzeln stärker vom Schwarzfleckenpilz besiedelt, wenn die Pflanzen sowohl durch Mangel als auch durch Überschuss an Stickstoff, Kalium und Phosphor gestresst sind, als wenn den Pflanzen optimale Mengen jedes Nährstoffs zur Verfügung stehen.
Die Bewässerung von Kartoffeln nach dem Trocknen der Spitzen erhöht die Häufigkeit und Schwere von Anthracnose-Schäden an Knollen um mindestens das Doppelte. Der Schweregrad der Knolleninfektion und die Anzahl der am Ausläuferende befallenen Knollen waren bei Knollen, die aus Pflanzen stammten, die von oben bewässert wurden, signifikant höher als bei Pflanzen, die von unten bewässert wurden. Durch den Boden fließendes Wasser spielt eine wichtige Rolle beim Transport des Inokulums vom infizierten Knollensamen zu den Tochterknollen.
Studien haben auch gezeigt, dass die Häufigkeit und Schwere von Anthracnose bei ungewaschenen Knollen zunimmt, wenn sie bei 15 °C gelagert werden оC gegen 5 оC und dass eine frühe Ernte und trockene Lagerung der Knollen den Ausbruch der Krankheit verhindern oder verringern kann. Die Entstehung schwarzer Flecken auf den Knollen wird durch sofortiges Abkühlen der Ernte minimiert, verglichen mit Knollen, die vor dem Abkühlen 12 Tage lang bei 10 °C gehalten werden. Es ist jedoch wichtig, die Ernte richtig zu trocknen, um die Entstehung von Fäulnis zu verhindern. Bei Langzeitlagerung gibt es keinen Unterschied zwischen dem Auftreten der Krankheit bei Knollen, die bei 2,5 °C oder 3,5 °C gelagert werden.
Möglichkeiten zur Bekämpfung von Kartoffel-Anthracnose bestehen in der Anwendung vorbeugender Maßnahmen und dem Schutz mit Hilfe von Fungiziden. Eines der wichtigsten Prinzipien der Schwarzfleckenbekämpfung besteht darin, die Menge an Inokulum im Boden aufgrund der Wirkung der Fruchtfolge und der Entfernung von Ernterückständen, Unkrautkartoffeln und Unkraut zu reduzieren. Selbst die längste Fruchtfolge mit Nicht-Wirtspflanzen (z. B. Getreide, Sojabohnen oder Mais) heilt den Boden nicht vollständig (da Anthracnose-Mikrosklerotien bis zu 8-15 Jahre auf dem Feld verbleiben), reduziert aber den Inokulumspiegel um ein Vielfaches .
Um das Auftreten dieser Krankheit zu verhindern und zu reduzieren, sollten folgende Maßnahmen ergriffen werden:
1. Auswahl von Sorten mit hoher Anthracnose-Resistenz, Vermeidung des Anbaus anfälliger Sorten auf infizierten Feldern;
2. Verwenden Sie zertifiziertes Saatgut von namhaften Herstellern und testen Sie es vor dem Kauf auf dem Feld oder im Geschäft. Vermeiden Sie infizierte Samen anfälligerer Sorten. Die Regelungen zur Zertifizierung von Pflanzkartoffeln aller Länder sehen derzeit keine Regelung von Anthracnose vor, da kein direkter Zusammenhang zwischen einer Schädigung der Uterusknolle und der Entwicklung einer Infektion an Tochterknollen besteht. In der Russischen Föderation durchgeführte PCR-Studien an Proben mit Anthracnose-Symptomen auf Blättern zeigten, dass von 96 Proben nur 5 von Anthracnose betroffen waren. Gleichzeitig schwankt die Inzidenz von C. coccodes in zertifizierten Saatgutknollen in den USA und im Vereinigten Königreich zwischen 0 und 90 % bzw. 0 bis 75 %. Infiziertes importiertes Saatgut ist der Hauptkanal für die Ausbreitung von Anthracnose in den Kartoffelanbaugebieten der Russischen Föderation;
3. Testen Sie das Saatgut auf C. coccodes, um festzustellen, ob eine Fungizidbehandlung erforderlich ist. Pflanzen Sie infiziertes Saatgut nicht auf sauberen, anthraknosefreien Feldern;
4. Vermeiden Sie es, Kartoffeln in schlecht entwässerten Böden anzupflanzen;
5. Durch die Pfluggrundbearbeitung wird eine tiefe Einarbeitung der Pflanzenreste und deren Zersetzung gewährleistet;
6. Ausgewogene und ausreichende Düngung;
7. Vermeiden Sie übermäßiges Gießen, insbesondere bei anfälligen und spät reifenden Sorten. Reduzierung der Wassermenge zwischen Trocknung und Ernte
8. Ernte der Knollen so schnell wie möglich nach der Trocknung des Krauts;
9. Schnelles Abkühlen von Kartoffeln im Lager. Präzise Temperatur- und Feuchtigkeitskontrolle während der Lagerung. Hohe Temperaturen und Kondensation auf der Oberfläche der Knolle tragen zur Krankheit bei;
10. Biobegasung des Bodens mit Gründüngung aus weißem Senf, Ölrettich, Steinklee, Sorghum-Sudanka-Hybride.
Wenn an den Knollen und im Boden eine Anthracnose-Infektion festgestellt wird, sollten spezielle Fungizide eingesetzt werden.
Chemischer Schutz gegen Anthracnose. Lange Zeit waren Fungizide mit Azoxysrobin die einzige Möglichkeit, Bodeninfektionen zu bekämpfen. In zahlreichen Tests zeigte Azoxystrobin, das beim Pflanzen oder Einarbeiten in die Furche aufgetragen wurde, eine konsistente Reduzierung der Anthracnose. Diese Behandlung verzögert die Entwicklung der Krankheit um mehrere Wochen. Da Azoxystrobin zu den Strobirulinen (FRAC-Klasse 11) gehört, die Resistenzen induzieren können, d. Ist Resistenz gegen Krankheitserreger vorhanden, wird dieses Thema insbesondere von konkurrierenden Herstellern von Pflanzenschutzmitteln rege diskutiert.
Derzeit wurde die Liste der gegen Anthracnose eingesetzten Wirkstoffe erheblich erweitert, da sich herausstellte, dass die Infektion von Kartoffeln während der gesamten Vegetationsperiode auftritt. Azoxystrobin bleibt der Maßstab für die Wirksamkeit gegen Anthracnose, sollte jedoch nicht mehr als einmal pro Saison angewendet werden. Die umfangreichste Liste von Fungiziden gegen Anthracnose ist in den USA registriert (Tabelle 14). Es werden mehrere Präparate zum Einbringen in die Furche während des Pflanzens empfohlen, der Rest - während der Vegetationsperiode der Kartoffeln.
Tabelle 14. Liste der Fungizide zur Bekämpfung von Kartoffel-Anthracnose, USA, 2021
Schwarzer Punkt | Azoxystrobin | 6.0 – 15.5 fl oz Aframe, Equation, Quadris Flowable, Satori, Willowood Azoxy 2SC | 14 |
Überschreiten Sie nicht die einmalige Anwendung eines Fungizids der Gruppe 11, bevor Sie es mit einem Fungizid mit einer anderen Wirkungsweise (Quadris und Headline) abwechseln sind Fungizide der Gruppe 11.
Quadris Opti ist eine Gruppe 11 und Fungizid der Gruppe M. |
|
Azoxystrobin + Chlorothalonil | 1.6pt Quadris Opti | 14 | |||
Azoxystrobin + Difenoconazol | 8.0 – 14.0 fl oz Quadris Top | 14 | |||
Pyraclostrobin | 6.0 – 9.0 fl oz Headline SC, EC | 3 | |||
Azoxystrobin + Benzovindiflupyr | 0.34 – 0.5 Unzen Elatus/1,000 Fuß Reihe | 14 | Beim Pflanzen in der Furche einen schmalen Streifen über dem Saatstück auftragen. Bei bandförmiger Anwendung nicht mehr als 9.5 Unzen pro Jahr betragen. | ||
Chlorothalonil | 1.0 – 1.5 pt Bravo Weather Stik Echo 720 1.5 – 2.25 pt Bravo Zn, Equus 500 Zn 0.875 – 1.25 lb Echo 90DF, Echo Zn 0.9 – 1.36 lb Bravo Ultrex 82.5WDG, Equus DF |
7 7 7 7
|
Beachten Sie die saisonalen Nutzungsbeschränkungen auf dem Etikett. Die aktuelle Kennzeichnung für die jährliche Verwendung von Chlorthalonil-Produkten in Wisconsin erlaubt Bravo-Produkte (Ultrex, WeatherStik, Zn) mit 11.2 lb ai/a (die spezielle W!-Registrierung läuft am 12 ab, eine Verlängerung ist jedoch in Bearbeitung – bitte überprüfen Sie die DATCP-Sonderregistrierungslisten ) und 31 lb ai/a Echo-Produkte (Zn, 17, 16.0DF) (spezielle WI-Registrierung läuft am 720 ab). | ||
Chlorthalonil + Cymoxanil | 2.0pt Ariston | 14 | Im Abstand von 7 bis 14 Tagen auftragen. Verwenden Sie kürzere Intervalle, wenn die Pflanzen schnell wachsen und der Krankheitszustand schwerwiegend ist. | ||
Cymoxanil + Famoxadon | 6.0 – 8.0 Unzen Tanos | 14 | Behandelt mehrere andere Krankheiten. Befolgen Sie die Richtlinien zum Resistenzmanagement. Zur Unterdrückung. | ||
Difenoconazol | 5.5 – 7.0 fl oz Top MP | 14 | Befolgen Sie die Richtlinien zum Resistenzmanagement. | ||
Black Dot (Forts.) | Fenamidon | 5.5 – 8.2 fl oz Grund | 14 | Behandelt mehrere andere Krankheiten. Befolgen Sie die Richtlinien zum Resistenzmanagement. Zur Unterdrückung. | |
Fluopyram + Pyrimethanil | 11.2 fl oz Luna Tranquility (Unterdrückung) | 7 | Beginnen Sie präventiv mit der Anwendung von Fungiziden. Tragen Sie pro Saison nicht mehr als 43.6 fl oz/a auf. Führen Sie nicht mehr als zwei aufeinanderfolgende Anwendungen eines Fungizids der Gruppe 2 oder 7 durch, bevor Sie abwechselnd ein Fungizid einer anderen Gruppe verwenden. | ||
Fluoxastrobin | 0.16 – 0.24 fl oz/1,000 Fuß Reihe Aftershock, Evito 480 SC 6.1 – 9.2 oz/a Tepera | 7 | Befolgen Sie die Richtlinien zum Resistenzmanagement. | ||
Flutolanil | 0.71 – 1.1 Pfund Moncut 70-DF | Behandlung beim Pflanzen | Sprühen Sie das Saatstück gleichmäßig in einem 4 bis 8 cm breiten Streifen um oder darüber, bevor Sie es mit Erde bedecken. | ||
Fluxapyroxad + Pyraclostrobin | 4.0 – 8.0 fl oz Priaxor | 7 | Machen Sie nicht mehr als 3 Anwendungen/a pro Saison. Pro Saison nicht mehr als 24.0 fl oz/a auftragen. | ||
mancozeb | 0.4 – 1.6 qt Dithane F45 4F 0.5 – 2.0 lb Dithane M45, Penncozeb 80WP, Penncozeb 75DF 1.0 – 2.0 lb Dithane 75DF Rainshield NT, Koverall, Manzate 200 75DF |
3
3
3 |
Überschreiten Sie nicht die Gesamtmenge von 11.2 lb AI/a EBDC pro Vegetationsperiode. Zu den EBDC-Materialien gehören Maneb, Mancozeb und Metiram. | ||
Mefentrifluconazol | 3.0 – 5.0 fl oz Provysol | 7 | Tragen Sie pro Anwendung nicht mehr als 5.0 fl oz (0.13 lb) pro Hektar auf. Verwenden Sie nicht mehr als 5.0 fl oz oder mehr | ||
Black Dot (Forts.) | 5 Anwendungen mit 3.0 fl oz pro Acre und Jahr. | ||||
Metaconazol | 2.5 – 4.0 Unzen Kürbis | 1 | Führen Sie nicht mehr als 4 Anwendungen pro Saison durch. Führen Sie nicht mehr als 2 aufeinanderfolgende Anwendungen durch. Nicht mehr als 16.0 oz/a pro Saison auftragen. | ||
Penthiopyrad | 10.0 – 24.0 fl oz Vertisan | 7 | Überschreiten Sie nicht 72.0 fl oz/a pro Jahr. Führen Sie nicht mehr als zwei aufeinanderfolgende Anwendungen von Vertisan durch, bevor Sie auf ein Fungizid mit einer anderen Wirkungsweise umsteigen. | ||
Pydiflumetofen + Fludioxonil | 9.2 – 11.4 fl oz Miravis Prime | 14 | Unterdrückung nur schwarzer Punkte. Tragen Sie nicht mehr als 2 Anwendungen pro Jahr auf dem Luftweg auf. Wenden Sie nicht mehr als 34.2 fl oz pro Acre und Jahr an. | ||
Pyraclostrobin + Metiram | 2.0 – 2.9 lb Cabrio Plus | 3 | Führen Sie nicht mehr als zwei aufeinanderfolgende Anwendungen durch, bevor Sie zu einem Fungizid wechseln, das nicht der Gruppe 2 oder M11 angehört. | ||
Zoxamid + Chlorothalonil | 32.0 – 34.0 fl oz Zing | 7 | Führen Sie nicht mehr als zwei aufeinanderfolgende Anwendungen durch, bevor Sie zu einer anderen Wirkungsweise wechseln. |
Ab 2023 sind in den USA auch die Wirkstoffe Pentachlornyltrobenzin, Mandipropamid + Difeconazol, Azoxystrobin + Mancozeb, Mefentrifluconazol + Pyraclostrobin erlaubt. Die meisten der aufgeführten Medikamente und Kombinationen aktiver Moleküle dürfen in der Russischen Föderation gegen Kraut- und Knollenfäule und Alternaria eingesetzt werden.
Eine radikale Zerstörung von Anthracnose mit Hilfe eines Fungizidschutzes wird nicht erreicht. Dies ist auf den verlängerten Zyklus der Krankheitsentstehung und Infektion aus verschiedenen Quellen zurückzuführen: durch Samen, Erde und Tröpfchen in der Luft. Der Rückgang des Krankheitsentwicklungsgrades ist dennoch signifikant – zweimal (Tabelle 15). Der Kartoffelertrag steigt auf einem hohen landwirtschaftlichen Hintergrund bei den besten Schutzoptionen (Blattverarbeitung zusätzlich zur Bodenausbringung) um 11-14 t/ha.
Tabelle 15. Auswirkung der Boden- und Blattanwendung von Fungiziden auf die Entwicklung von Anthracnose, Sorte Russet Burbank, 2012
Behandlung IF=Infurche F=Blatt @20cm | Produkt / ha | Visueller % schwarzer Punkt – untere 10 cm des Stiels | C. kokodiert ng DNA/g Kartoffelstamm | Ertrag MT/ha |
Quadris IF | 639 ml | 48.2 ab | 1798.4 ab | 58.68 ab |
Quadris IF Mancozeb F | 639 ml 2.2 kg | 41.0 b | 900.7-CD | 62.52 die |
Quadris IF Priaxor F | 639ml 426ml | 31.7 c | 622.1 d | 54.36 bc |
Priaxor IF | 480 ml | 50.0 die | 1542.6 ab | 54.72 bc |
Priaxor IF Bravo ZN F | 480ml 1135ml | 35.8 bc | 892.6-CD | 54.60 bc |
Priaxor IF Quadris F | 480ml 639ml | 25.6-CD | 1332.0 ab | 60.00 ab |
Priaxor IF Schlagzeile F | 480ml 426ml | 28.3-CD | 789.0-CD | 65.76 die |
Quadris IF Fontelis F | 639 ml 1.1 kg | 22.7 d | 595.1 d | 56.04 bc |
Vertisan IF Quadris F | 1646ml 639 | 35.5 | 2249 die | 57.36 bc |
Unbehandelt | 51.5 die | 2072.9 die | 51.96 c |
Die erhaltenen Daten (siehe Tabelle 15) zeigen deutlich, dass eine einzige Anwendung auf den Boden beim Pflanzen von Strobirulin-Fungiziden nicht ausreicht, um diese Krankheit zu bekämpfen. In Kanada wird diese Option sogar als unvernünftig angesehen; dort wird empfohlen, Anthracnose-Fungizide auf Basis von Azoxystrobin, Difeconazol, Mefentrfluconazol, Benzovindiflupyr und Fluopyram + Pyrimethanil nur während der Vegetationsperiode anzuwenden. Tatsächlich muss die Wirksamkeit gegen Anthracnose bei der Entwicklung eines Systems zum Schutz von Kartoffeln vor schweren Krankheiten (Alternaria, Kraut- und Knollenfäule) während der Vegetationsperiode berücksichtigt werden. Es wurde auch festgestellt, dass die Einführung von Azoxystrobin ganz am Ende der Vegetationsperiode erfolgt , eine Woche nach der Austrocknung, bewirkt zusätzlich eine deutliche Verringerung der Knollenschädigung.
Der Schutz des Pflanzenmaterials vor Anthracnose gilt derzeit als unwirksam, obwohl viele Wirkstoffe (Difeconazol, Pyraclostrobin, Imidazol) das Inokulum auf der Oberfläche der Knollen fast vollständig zerstören (Abbildung 16). Dies ist jedoch ein kurzfristiger Effekt, dessen Folgen innerhalb eines Monats recht schnell ausgeglichen werden, da die Infektion auch in den Knollen auftritt.

Abschließend. Die Schädlichkeit von Anthracnose hat in letzter Zeit deutlich zugenommen, dieser Erreger ist in die Kategorie der wirtschaftlich bedeutsamen Probleme gerückt. Der Pilz Colletotrichum coccodes, der Anthracnose auf Kartoffeln verursacht, ist ein schwer vorhersehbarer und schwer fassbarer Krankheitserreger. Die Erstinfektion ist latent. Die Infektion von Wurzeln, Stolonen sowie unterirdischen und oberirdischen Stängeln beginnt relativ früh in der Vegetationsperiode, offensichtliche Symptome oder Anzeichen des Erregers (Mikrosklerotien) treten jedoch möglicherweise erst zum Zeitpunkt der Ernte an den Pflanzen auf. Knollen werden auf dem Feld infiziert, zeigen jedoch möglicherweise erst in der Mitte der Lagerzeit offensichtliche Symptome. Während der Langzeitlagerung breitet sich die Krankheit nicht von Knolle zu Knolle aus, jedoch treten während der Lagerung latente Infektionen auf und die Knollenschädigung nimmt zu. Die Symptome von Anthracnose sind oft nicht klar und eindeutig und gehen mit Welke durch Alternaria, Verticillium, natürlichem Altern, Stickstoffmangel usw. einher. Daher ist die Identifizierung der Krankheit und die Beurteilung ihrer Folgen im Wachstumsprozess schwierig. Die Auswirkungen der Krankheit auf den Kartoffelertrag können nicht vorhergesagt werden, da so viele Bedingungen und Faktoren, sowohl biotische als auch abiotische, die Schädlichkeit des Krankheitserregers beeinflussen.
Anthracnose ist schwer zu kontrollieren. Das Inokulum überlebt viele Jahre im Boden, breitet sich mit Pflanzmaterial und Regen aus und die Infektion setzt sich während der gesamten Vegetationsperiode fort. Die längste Fruchtfolge reinigt den Boden nicht und der Wechsel von Kartoffeln mit Feldfrüchten wie Karotten, Rüben, Zwiebeln, gelbem Senf und Raps (für Samen) führt zu einer Häufung von Infektionen. Eine Minimierung der Schäden durch Anthracnose ist durch den umfassenden Einsatz organisatorischer und technischer Maßnahmen und den qualifizierten, antiresistenten Einsatz von Azoxystrobin und einer Reihe anderer Wirkstoffe von Fungiziden möglich. Besonderes Augenmerk sollte auf den Grad der Infektion von Saatgut und Boden gelegt werden. Es ist wichtig, Kartoffeln vollständig und ausgewogen zu düngen und zu gießen, die Produkte rechtzeitig zu ernten und richtig zu lagern, Unkraut, einschließlich Unkrautkartoffeln, wirksam zu unterdrücken und die begasende Wirkung von Gründüngung zu nutzen. Wirksame Fungizide sollten beim Einpflanzen in den Boden, in der ersten Hälfte der Vegetationsperiode und vor der Ernte abgewechselt und angewendet werden. Die chemische Methode der Anthracnose-Bekämpfung sollte ein obligatorischer Bestandteil eines modernen Kartoffelschutzsystems sein.

Materialautor: Sergey Banadysev, Doktor der Agrarwissenschaften. Naturwissenschaften, „Doka-Gene Technologies“